在生命科學領域的蛋白質研究中，從細胞或組織樣本中高效、完整地提取蛋白質是后續(xù)實驗的基礎。RIPA（Radio Immunoprecipitation Assay）裂解液（強）作為一種常用的蛋白質裂解試劑，憑借其成分和強大的裂解能力，能夠快速破碎細胞、溶解蛋白質，同時抑制蛋白酶活性，為蛋白質組學研究、Western Blot 分析、免疫沉淀等實驗提供高質量的蛋白樣本 。
一、成分與裂解原理
（一）核心成分組成
RIPA 裂解液（強）由多種具有不同功能的成分組成。其基礎緩沖體系通常為 Tris - HCl 緩沖液，用于維持裂解過程中的 pH 穩(wěn)定，一般 pH 值調(diào)節(jié)至 7.2 - 7.6 。表面活性劑是該裂解液的關鍵成分，包含非離子型表面活性劑 Triton X - 100、離子型表面活性劑 SDS（十二烷基硫酸鈉）和脫氧膽酸鈉 。Triton X - 100 能破壞細胞膜的脂質雙分子層結構，使細胞裂解；SDS 不僅具有更強的細胞裂解能力，還能與蛋白質充分結合，使蛋白質變性并帶上負電荷，為后續(xù)的蛋白質分離和分析奠定基礎；脫氧膽酸鈉則輔助其他表面活性劑，增強對細胞內(nèi)膜結構的破壞和蛋白質的溶解 。此外，裂解液中還含有蛋白酶抑制劑（如 PMSF、抑肽素等）和磷酸酶抑制劑（如氟化鈉、β - 甘油磷酸鈉），分別用于抑制蛋白酶和磷酸酶的活性，防止蛋白質降解和磷酸化修飾的改變 。
（二）裂解作用機制
當 RIPA 裂解液（強）與細胞或組織樣本接觸時，Tris - HCl 緩沖體系首先穩(wěn)定環(huán)境 pH，為后續(xù)反應提供適宜條件。Triton X - 100 憑借其親水性頭部和疏水性尾部結構，插入細胞膜的脂質雙分子層中，破壞膜的完整性，使細胞內(nèi)容物釋放出來 。SDS 則進一步與釋放出的蛋白質結合，其帶負電的硫酸根離子與蛋白質的氨基酸殘基相互作用，使蛋白質變性展開，并均勻帶上負電荷，消除蛋白質間的電荷差異和空間結構差異 。脫氧膽酸鈉協(xié)同作用，增強對細胞內(nèi)膜系統(tǒng)（如線粒體膜、內(nèi)質網(wǎng)膜）的破壞，促進膜結合蛋白的溶解 。蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑在裂解過程中迅速發(fā)揮作用，分別與蛋白酶和磷酸酶的活性位點結合，抑制其催化活性，保護蛋白質的結構和修飾狀態(tài) 。通過多種成分的協(xié)同作用，RIPA 裂解液（強）實現(xiàn)了高效的細胞裂解和蛋白質提取。
二、產(chǎn)品性能特點
（一）高效裂解能力
RIPA 裂解液（強）對各類細胞和組織樣本均具有顯著的裂解效果。無論是貼壁細胞（如 HeLa 細胞、A549 細胞）、懸浮細胞（如 Jurkat 細胞），還是動物組織（如肝臟、腦組織）、植物組織（如葉片、種子），在適當?shù)奶幚項l件下，都能被快速裂解 。其含有的 SDS 等強離子型表面活性劑，能夠強力破壞細胞結構和蛋白質 - 蛋白質、蛋白質 - 脂質之間的相互作用，使蛋白質充分釋放到裂解液中。在細胞裂解實驗中，與常規(guī)裂解液相比，使用 RIPA 裂解液（強）處理后的細胞，蛋白質提取量通常更高，能夠滿足對低豐度蛋白質檢測的需求 。
（二）全面的蛋白質保護
裂解液中的蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑組成了多重保護體系。蛋白酶抑制劑針對絲氨酸蛋白酶、半胱氨酸蛋白酶等多種類型的蛋白酶發(fā)揮作用，防止蛋白質被水解斷裂，維持蛋白質的完整性 。磷酸酶抑制劑則有效抑制磷酸酶活性，保持蛋白質的磷酸化修飾狀態(tài)，這對于研究蛋白質的信號傳導通路、磷酸化調(diào)控機制等具有重要意義 。在研究蛋白激酶信號通路的實驗中，使用 RIPA 裂解液（強）提取的蛋白樣本，能夠準確反映蛋白質的磷酸化水平，為后續(xù)的 Western Blot 磷酸化特異性抗體檢測提供可靠樣本 。
（三）良好的兼容性
RIPA 裂解液（強）與后續(xù)的蛋白質分析實驗具有良好的兼容性。提取的蛋白質樣本可直接用于 Western Blot 實驗，SDS 使蛋白質變性并帶上負電荷，便于在 SDS - PAGE 凝膠電泳中根據(jù)分子量大小進行分離；也適用于免疫沉淀實驗，雖然裂解液中的 SDS 可能對某些抗原 - 抗體結合有一定影響，但通過適當稀釋或優(yōu)化實驗條件，仍能獲得較好的沉淀效果 。此外，該裂解液與常見的蛋白質定量方法（如 BCA 法、Bradford 法）兼容，科研人員能夠準確測定提取蛋白的濃度，為后續(xù)實驗提供數(shù)據(jù)支持 。
（四）操作簡便性
RIPA 裂解液（強）使用方法相對簡便。科研人員只需將適量的裂解液加入細胞或組織樣本中，通過溫和振蕩或反復吹打，即可在較短時間內(nèi)完成裂解過程 。對于貼壁細胞，可直接在培養(yǎng)板中加入裂解液進行裂解；對于組織樣本，可先進行研磨或勻漿處理，再加入裂解液。與一些需要復雜操作步驟（如超聲破碎、凍融循環(huán)）的裂解方法相比，RIPA 裂解液（強）的操作更易于掌握，節(jié)省實驗時間和人力成本，適合大規(guī)模樣本處理和高通量實驗 。
三、實驗應用與操作要點
（一）細胞樣本處理
貼壁細胞裂解：吸去細胞培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用預冷的 PBS 輕輕洗滌細胞 2 - 3 次，去除殘留培養(yǎng)基和雜質 。每孔加入適量的 RIPA 裂解液（強）（如 6 孔板每孔加入 200 - 300 μL），將培養(yǎng)板置于冰上，輕輕晃動培養(yǎng)板使裂解液均勻覆蓋細胞表面，作用 10 - 15 分鐘，期間可每隔幾分鐘輕輕晃動一次 。裂解結束后，用細胞刮將細胞從培養(yǎng)板上刮下，將裂解液和細胞轉移至離心管中，4℃、12000 rpm 離心 10 - 15 分鐘，取上清液即為提取的蛋白質樣本，可用于后續(xù)實驗 。
懸浮細胞裂解：將懸浮細胞轉移至離心管中，1000 rpm 離心 5 分鐘，棄去上清液，收集細胞沉淀 。用預冷的 PBS 洗滌細胞 2 - 3 次，去除殘留培養(yǎng)基。向細胞沉淀中加入適量預冷的 RIPA 裂解液（強），輕輕吹打混勻，使細胞充分裂解，冰上放置 10 - 15 分鐘 。同樣在 4℃、12000 rpm 離心 10 - 15 分鐘，取上清液作為蛋白質樣本 。
（二）組織樣本處理
將新鮮的組織樣本（如動物肝臟、植物葉片）置于預冷的研缽中，加入適量液氮，迅速研磨成粉末狀 。將研磨后的組織粉末轉移至離心管中，按照每 100 mg 組織加入 1 mL RIPA 裂解液（強）的比例，加入裂解液 。充分渦旋振蕩或使用勻漿器進行勻漿處理，使組織與裂解液充分混合，冰上裂解 15 - 20 分鐘 。隨后，4℃、12000 rpm 離心 15 - 20 分鐘，取上清液，即為提取的組織蛋白質樣本 。
（三）操作注意事項
試劑儲存與使用：RIPA 裂解液（強）應避光、低溫（4℃）保存，避免高溫或長時間暴露在空氣中導致成分降解和失效 。使用前需將裂解液平衡至室溫，避免因溫度過低導致蛋白質沉淀。由于裂解液中含有 SDS 等成分，使用時應佩戴手套、護目鏡等防護用具，防止試劑接觸皮膚和眼睛 。
樣本處理細節(jié)：處理細胞樣本時，確保 PBS 洗滌充分，避免殘留培養(yǎng)基中的成分干擾裂解效果。對于組織樣本，研磨或勻漿過程要迅速且充分，保證細胞破碎，提高蛋白質提取率 。在裂解過程中，應始終將樣本置于冰上操作，降低蛋白酶活性，減少蛋白質降解 。
后續(xù)實驗優(yōu)化：由于 RIPA 裂解液（強）中含有 SDS，在進行免疫沉淀等對蛋白質天然構象要求較高的實驗時，可能需要對樣本進行適當稀釋或通過透析、丙酮沉淀等方法去除部分 SDS 。在使用不同來源的細胞或組織樣本時，可通過預實驗優(yōu)化裂解液的用量和裂解時間，以獲得最佳的蛋白質提取效果 。
RIPA 裂解液（強）以其高效的裂解能力、全面的蛋白質保護、良好的兼容性和操作簡便性，成為蛋白質研究中工具。科研人員在實驗過程中嚴格遵循操作規(guī)范，合理優(yōu)化實驗條件，能夠充分發(fā)揮該產(chǎn)品的優(yōu)勢，為蛋白質相關研究提供高質量的樣本，推動生命科學領域的深入探索。
地址：上海市奉賢區(qū)金大公路8218號1幢
郵箱：1006909781@qq.com
傳真：QQ1006909781
當前位置：